酶联免疫吸附试验的原理和类型
酶联免疫吸附试验是一种免疫分析技术,广泛用于测定液体样品中的蛋白质、抗体或激素。酶联免疫吸附试验(ELISA)的标准程序是将蛋白质、抗体或激素(即抗原)直接或用捕获抗体(捕获Ab)固定在固体载体上,然后加入初级检测抗体(初级检测Ab)形成抗原-抗体复合物。如果抗体已经被酶标记,可以直接用于确定抗原的量,否则,可以使用另一种酶标记的二级抗体来确定抗原的量。测定抗原量的方法是加入酶的底物,作用后产生的颜色与样品中抗原的量成正比。根据这一原理,可以计算出样品中抗原的总量或浓度。
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1.直接酶联免疫吸附试验
抗原的总量可以通过直接将抗原固定在固体载体上,加入酶标记的一级抗体来确定。这种一级抗体的特异性非常重要。
优点:操作程序短,无需使用二抗即可避免相互作用。
缺点:实验中所有一级抗体都要用酶标记,但不是每种抗体都适合标记,成本相对增加。
2.间接酶联免疫吸附试验
这种测定方法和直接法类似,不同的是一级抗体没有酶标记,用酶标记的二级抗体鉴定一级抗体来确定抗原的量。
优点:二抗可以增强信号,有多种选择可以做不同的测定和分析。没有酶标记的一级抗体能保持最大的免疫反应性。
缺点:互动概率高。
3.夹心酶联免疫吸附试验
被检测的抗原包被在两个抗体之间,其中一个抗体将抗原固定在固体载体上,即捕获抗体。另一种是检测抗体,可以用酶标记,直接测抗原量;或者未标记,然后通过酶标记的二级抗体确定抗原的量。必须仔细选择这两种抗体,以避免对同一抗原结合位点的相互作用或竞争。
优点:灵敏度高,特异性高,抗原无需预先纯化。
缺点:一个抗原必须有两个以上的抗体结合位点。
4.竞争法(竞争性酶联免疫吸附试验)
样品中的抗原(游离抗原)与纯化并固定在固体载体上的抗原(固定抗原)竞争相同的抗体。当样品中游离抗原较多时,能结合的抗体较多,而固定抗原只能结合较少的抗体,反之亦然。洗涤步骤后,将游离抗原和抗体的复合物洗去,只留下固定抗原和抗体的复合物,与仅固定抗原的对照组的结果进行比较,根据色差可以计算出样品中的抗原含量。
优点:适用于不纯样品,数据重现性高。
缺点:整体灵敏度和特异性差。
5.最新的酶联免疫吸附技术
基于细胞的ELISA:是一种新的蛋白质定性检测技术,直接在微孔板中培养细胞,不需要提取蛋白质和裂解细胞,直接测定刺激或抑制后微孔板中蛋白质的变化。
优点:不需要裂解细胞,所以靶蛋白损失最小,可以确定全细胞、贴壁细胞和非贴壁细胞。
缺点:抗原量无法确定。
影响酶联免疫吸附试验结果的原因及解决方法
样本收集和保存
酶联免疫吸附测定最常用的临床标本是血清(血浆)。应注意避免严重溶血,因为血红蛋白含有具有过氧化物样活性的血红素基团,在孵育过程中容易吸附在固相上,与HRP底物反应产生假阳性。
在样品采集和血清分离中,应注意避免细菌污染。一方面,细菌分泌的酶可能分解抗原、抗体等蛋白质;另一方面,细菌的内源酶,如大肠杆菌的β-半乳糖苷酶,可能对相应酶标记的测定方法造成非特异性干扰。
样品应避免反复冷冻和解冻。反复冻融产生的机械剪切力会破坏标本中的蛋白质等分子,导致假阴性结果。另外,样品混合均匀时,不要剧烈摇晃,反复上下颠倒混合。
一般来说,如果在采集样品的当天进行测试,样品可以及时保存在4℃下备用;但第二天要检测的样品要及时包装,在-20℃冷冻备用。如果样品要长期保存,最好在-70℃冷冻。
3)在表格菜单栏的插入散点图中选择第一种类型
4)在图表工具的快速布局中选择fx图标,得到下图。如果Excel版本更低,可以直接跳到步骤6)。
5)点坐标轴标题,可以修改。修改后可得到以下标准曲线。
6)或者在较低版本的excel中,选择图表工具选项中的趋势线|线性趋势线。
7)在图表中选择趋势线,右键选择“设置趋势线格式”。在弹出的对话框中,勾选“显示公式”,点击“关闭”,得到标准曲线。
8)可以将试管中测得的吸光度值代入图表中的公式Y=1.001x+0.0171,得到所需成分的含量,即x值。
酶联免疫吸附试验的疑难疾病
1)浅色渲染和低灵敏度
2)误报多,背景高,甚至花板
3)重复性差
4)白板
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